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      1. 臨床醫學檢驗技士備考資料:溶血反應的檢測試劑

        時間:2023-03-20 15:27:52 檢驗技師/士 我要投稿
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        臨床醫學檢驗技士備考資料:溶血反應的檢測試劑

          溶血反應的檢測試劑

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          (一)補體

          檢測血清補體水平或補體活性時需要從受檢者采血及分離血清。做補體結合試驗時多采用豚鼠血清作為實驗用補體的來源。因為補體在體外極易衰變,所以檢測補體活性的血清標本和作為補體試劑的血清必須新鮮。

          受檢者一般做靜脈采血,在動物可做心臟采血。血清分離后應及時使用,最好在當日用完。必須保存時采用小量分裝的辦法,置-70℃下可保存數月,避免反復凍融。凍干制品可長期保存,但其活性都不同程度地比新鮮血清降低。

          以豚鼠血清作補體來源時,應考慮到個體差異。為了確保血清中補體的有效活性,必須取3只以上豚鼠的血清混合后使用。

          (二)綿羊紅細胞

          從綿羊頸靜脈無菌采血,抽出血液后立即小心地注入放有璃珠的無菌干燥三角燒瓶中,充分旋搖15~20min,以除去纖維蛋白。也可將羊血與等量或2倍量的Alsever血液保存液混合,既有抗凝作用,又適于儲存;分裝后置4℃,可使用3周。

          實驗前,取適量抗凝血,加入8~10倍的生理鹽水,輕輕混勻后2000r/min離心5min;棄上清,沉淀的紅細胞用生理鹽水再洗一次,這時上清為無色澄清,如顯紅色說明有溶血現象,應更換新鮮羊血;第三次用緩沖液洗滌,棄上清,取壓積紅細胞用緩沖液配制SRBC懸液,使用濃度一般為2%~5%。為使紅細胞濃度標準化,可吸取少量紅細胞懸液,中入20~30倍的稀釋液中,在542nm波長比濁,以吸光度為標準調整紅細胞濃度。

          (三)溶血素

          溶血素即抗綿羊紅細胞抗體,多是以綿羊紅細胞免疫家兔而得到兔抗血清。一般沒有必要進一步提純抗體,但在試驗前需先進行加熱56℃30min或60℃3min以滅活補體。

          由于補體溶血試驗及補體結合試驗均是比較精密的試驗,其結果與溶血素的效價有關,所以試驗需要滴定溶血素效價;在制備抗血清的過程中,于動物采血前和分離抗血清后也需要滴定溶血素效價。

          1.溶血素稀釋稀釋溶血素時,要先對效價有個大概的估計,以便確定稀釋度的范圍。動物采血前滴定時稀釋范圍要稍大些,實驗前的滴定便以原先的記錄作為參考(溶血素的效價多在數千單位以上)。溶血素稀釋一般不采用連續倍比稀釋法,因為稀釋到最后時跨度太大,不容易確定單位。為了便于操作,現舉例按表14-1配制不同稀釋度的溶血素。

          2.效價滴定將稀釋好的溶血素及其他試劑按表14-2所示逐步加入到各試管中,放置37℃水浴,不要蓋上水浴箱的蓋子,以免蓋子上冷凝的水蒸氣滴入試管內引起非補體性溶血。30min后取出觀察結果。

          溫育反應后,完全溶血的試管內液體紅色透明,放置一段時間后管底無細胞沉淀,離心后可見少許細胞碎渣。不溶血的管內液體渾濁;放置后可見紅細胞沉淀,上清無色透明。不同程度的不完全溶血介于兩者的中間變化態。

          按照以上標準,以產生完全溶血的最高稀釋管為最大有效反應管,以該管的溶血素稀釋倍數為溶血素產效價。例如表14-2中的溶血素效價應為1:4000;在1:4000稀釋的情況下,反應液中所含溶血素的的量為1U/ml。

          做補體活性測定或補體結合試驗時,一般使用2U/ml溶血素(在本例做1:2000稀釋),與SRBC懸液等體積混合。

          (四)稀釋緩沖液

          磷酸緩沖液或巴比妥緩沖液等均可用于溶血試驗,pH值應調至7.2~7.4之間。另加入適量氯化鈉以保持等滲,并適當地加入一些鈣離子和鎂離子,這是補體活化所不可缺少的。有的配方還加入0.1%的明膠以使蛋白溶液穩定;加入0.01%NaN3可以防腐,利于較長時間保存。

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