1. <tt id="5hhch"><source id="5hhch"></source></tt>
    1. <xmp id="5hhch"></xmp>

  2. <xmp id="5hhch"><rt id="5hhch"></rt></xmp>

    <rp id="5hhch"></rp>
        <dfn id="5hhch"></dfn>

      1. 大鼠腦干DVC區注射ghrelin對弓狀核NPY mRNA及AgRP m

        時間:2022-12-12 04:44:12 論文范文 我要投稿
        • 相關推薦

        大鼠腦干DVC區注射ghrelin對弓狀核NPY mRNA及AgRP mRNA表達的影

                           作者:陳新科 李清春 陳 蔣正堯 管洪在

        【摘要】  目的 探討腦干迷走神經復合體(DVC)區微量注射ghrelin對攝食的影響及其可能機制。方法 72只雄性SD大鼠隨機分成給藥組和正常對照組,每組36只大鼠,行DVC區埋管手術,術后恢復7 d。7 d后給藥組大鼠DVC區微量注射20 pmol的ghrelin,正常對照組大鼠DVC區微量注射等體積生理鹽水。兩組分別于給藥后1、2、3 h取大鼠下丘腦提取RNA,應用熒光定量PCR方法檢測大鼠下丘腦弓狀核神經肽Y(NPY)及刺鼠色蛋白相關蛋白(AgRP)mRNA的表達情況。結果 給藥組大鼠給藥后1、2、3 h下丘腦NPY mRNA和AgRP mRNA的表達水平均明顯高于正常對照組,差異有顯著性(t=2.79~9.12,P<0.05)。給藥組大鼠給藥后2 h下丘腦NPY mRNA和AgRP mRNA的表達水平明顯高于給藥后1 h及3 h組(F=16.55、10.45,q=3.89~4.45,P<0.05),但給藥后1 h與3 h下丘腦NPY mRNA和AgRP mRNA的表達水平比較差異無顯著性(P>0.05)。結論 作用于大鼠DVC區的ghrelin可能通過下丘腦弓狀核NPY、AgRP神經通路促進攝食活動。 
        【關鍵詞】  Ghrelin;下丘腦;弓狀核;神經肽Y;刺鼠色蛋白相關蛋白;大鼠
        hrelin是生長素促分泌素受體(GHS?R)的內源性配體,由28個氨基酸組成,在飲食的控制中發揮著重要的作用。已有研究表明,外周和腦室注射ghrelin都可使攝食量明顯增加。盡管GHS?R分布在腦中樞的多個區域,但目前絕大多數研究認為,無論中樞還是外周ghrelin促進攝食作用都是通過下丘腦弓狀核神經肽Y(NPY)、 刺鼠色蛋白相關蛋白(AgRP)神經元上的GSH?R介導的[1]。KIMBERL等[2]在大鼠第三腦室和第四腦室注射ghrelin后明顯地增加了下丘腦弓狀核NPY的表達,但是第三腦室和第四腦室相互交通,注射在任何一個腦室的藥物均有可能彌散到另一個腦室,從而影響結果的分析。最近ZIGMAN等[3]用原位雜交法的研究結果表明,在大鼠迷走神經復合體(DVC)區的3個組成部分:孤束核、迷走神經運動背核和最后區均有GHS?R的表達。FAUL?CONBRIDGE等[4]在大鼠右側DVC區注射10 pmol ghrelin獲得相當于下丘腦弓狀核注射30 pmol的攝食增加反應,提示在中樞ghrelin誘發的多食反應中,DVC可能和下丘腦弓狀核同樣重要。本文采用熒光定量PCR的方法檢測大鼠DVC區微量注射ghrelin 后下丘腦NPY mRNA及AgRP mRNA表達的變化,進而探討腦干DVC區微量注射ghrelin促進攝食的可能機制,F將結果報告如下。
          1  材料和方法
          1.1  動物與分組
            
          健康成年雄性SD大鼠72只,體質量250~350 g,由山東中醫藥大學實驗動物中心提供。隨機分成給藥組和正常對照組,每組又根據注射后檢測間隔時間的不同分為3個亞組,即1 h組、2 h組和3 h組,每個亞組12只大鼠。給藥組大鼠DVC區埋管后微量注射20 pmol ghrelin,正常對照組DVC區以相同方法埋置套管,微量注射等體積生理鹽水。
          1.2  主要試劑與儀器
            
          Ghrelin 購自美國肽公司(American Peptide Company, INC),生理鹽水溶解。TRIzol 購自美國Invitrogen公司。逆轉錄試劑盒購自MBI公司。 SYBR Green熒光定量PCR試劑盒購自TOYOBO公司。熒光定量PCR儀為ABI 7500。立體定位儀為日本Narishige公司生產。紫外線分光光度計為Eppendorf Biophotometer公司生產。引物由上海生工合成,序列如下:內參照β?actin 上游引物5′?CCATCCAGGCTGTGTTGTCC?3′,下游引物5′?GCTTCTCTTTAATGTCACGCACG?3′;PCR產物長度為243 bp。NPY 上游引物5′?TGTGGACTG?ACCCTCGCTCTAT?3′,下游引物5′?TGTAGTGT?CGCAGAGCGGAGTA?3′;PCR產物長度為139 bp。AgRP上游引物5′?AGCTTTGGCAGAGGTGCTA?GATC?3′,下游引物5′?TGCCAGTACCTAGCTTGCGG?3′;PCR產物長度為173 bp。
          1.3  實驗方法
          1.3.1  DVC區埋置套管  SD大鼠在(22±1)℃室溫下,保持12 h白天、12 h黑夜循環的環境下飼養,自由飲水和進食。手術當天,大鼠用80 g/L水合氯醛(400 mg/kg)腹腔麻醉,俯臥位,固定在立體定位儀上,頭部正中切口,剝離骨膜,使前后囟位于同一水平面。用三棱針在顱骨表面鉆孔,清除腦膜,參照大鼠腦圖譜[5],將長15 mm、內徑0.3 mm、外徑0.4 mm的自制不銹鋼套管垂直置入右側DVC區(前囟后13.8 mm,正中線旁開0.4 mm,顱骨表面下8.5 mm),將一小螺絲釘固定于顱骨表面,用502膠和自凝牙托粉固定套管,并置入不銹鋼內芯防止阻塞[6]。
          1.3.2  埋管位置鑒定  分組實驗前先行埋管位置準確性的鑒定。大鼠手術后恢復7 d,分籠飼養,每天腹腔注射2萬單位青霉素預防感染。經套管微量注射0.2 μL 滂胺天藍,然后心臟灌流生理鹽水和40 g/L甲醛后,取腦,以40 g/L 蔗糖?甲醛溶液固定,50 μm冠狀冷凍切片,觀察DVC置管定位準確性。重復此實驗,直至連續8只大鼠均能準確定位。
          1.3.3  RNA的提取  大鼠手術后恢復7 d,給藥組大鼠微量注射20 pmol ghrelin,2 min內注完,留針10 min;正常對照組同樣方法給予等體積生理鹽水。給藥和測定均在每天的上午10:00開始,實驗前3 d即開始模擬注射操作,以減少應激反應。所有動物均自由攝食。給藥后1、2、3 h分別取大鼠下丘腦,用Trizol Reagent常規方法提取總RNA,Eppendorf紫外線分光光度計測定RNA濃度和純度,并進行8 g/L瓊脂糖凝膠電泳,觀察RNA完整性。
          1.3.4  cDNA合成和熒光定量PCR反應  取5 μg總RNA,以Oligo dT為引物,按試劑盒說明書進行逆轉錄反應得到cDNA備用。定量PCR前將樣品稀釋1 000倍,反應體系為25 μL,含cDNA 2.5 μL,SYBR Green Mix 12.5 μL,10 μmol/L 上下游引物各1 μL,RNase?free Water 8 μL。反應條件:95 ℃60 s預變性;95 ℃ 15 s, 60 ℃ 60 s共40個循環。
          1.3.5  熒光定量PCR結果的計算  △△ct=(目的ct值-內參照ct值)-(目的ct值校正數-內參照ct值校正數),然后取2-△△ct作為樣品初始cDNA的相對量。ct值表示每個反應管內的熒光信號到達設定的域值時所經歷的循環數。
          1.4  統計學分析
            
          采用PPMS 1.5[7]統計軟件進行數據處理,數據以±s表示,數據間比較采用方差分析和t檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。
          2  結果
            
          給藥組和正常對照組大鼠下丘腦中均檢出了NPY mRNA、AgRP mRNA及內參照基因的表達(圖1)。熔解曲線分析可見單峰值,排除了非特異性擴增(圖2)。給藥組大鼠給藥后1、2、3 h下丘腦NPY mRNA及AgRP mRNA的表達水平均明顯高于正常對照組(t=2.79~9.12,P<0.05)。給藥組大鼠給藥后2 h下丘腦NPY mRNA及AgRP mRNA的表達水平明顯高于給藥后1 h及3 h(F=16.55、10.45,q=3.89~4.45,P<0.05),給藥后1 h與3 h下丘腦NPY mRNA及AgRP mRNA表達水平比較,差異無差異性(P>0.05)。見表1。 圖1  β?actin及NPY、AgRP的熒光定量PCR產物電泳圖(略)
           
          M為DNA Maker;①、②實驗組NPY;③對照組NPY;④對照組AgRP;⑤⑥實驗組AgRP;⑦陰性對照
          圖2  熔解曲線圖(略)
           
          表1  DVC 區注射ghrelin后不同時間大鼠下丘腦NPY mRNA和AgRP mRNA表達比較(略)
          
          與正常對照組比較,*t=2.79~9.12,P<0.05;與其他時間點比較,F=16.55、10.45,#q=3.89~4.45,P<0.05
          3  討論
           
          Ghrelin是由胃黏膜內分泌X/A樣細胞釋放的GSH?R的內源性配體,其第3位的絲氨酸被辛酰化,這一修飾是其發揮活性所必需的。除了可促進生長素釋放,ghrelin 還具有促進食欲,增加體質量,參與體質量和能量穩態的長期調節等作用[8]。它是迄今所發現的在禁食狀態下分泌增多的胃腸激素,即在饑餓和餐前有一個分泌峰,而進食后血漿ghrelin水平下降, 攜帶一種“反映胃營養充載狀態的信息”傳入腦中樞調節能量代謝[9,10],被稱為“攝食啟動因子或饑餓激素”。對ghrelin的研究有著重要的意義,它是第一個被發現的促進食欲、減少脂肪利用的全身性循環激素,和參與肥胖調控的leptin作用相反,且參與體質量和能量穩態的長期調節,是減肥瘦身藥物開發的作用靶點;ghrelin受體激動劑可用于治療神經性厭食,研究ghrelin調節攝食的神經內分泌機制,可為防治肥胖提供有價值的資料。
           
          絕大多數研究結果證實,ghrelin刺激攝食的作用靶點是下丘腦弓狀核NPY、AgRP神經元[1],這是ghrelin誘發多食反應的前腦機制,因為大約90%的NPY、AgRP神經元表達GHS?R[11]。已有實驗證實,腦室或腹腔注射ghrelin均引起下丘腦弓狀核c?Fos和NPY mRNA、AgRP mRNA表達增加,ghrelin所誘導的飲食促進作用可以被抗NPY、AgRP抗體或NPY Y1受體抗劑所阻斷。低劑量ghrelin 弓狀核區注射可以很明顯地增加大鼠攝食量。近年來,ghrelin其他潛在作用位點的研究成為關注的焦點。已經證實迷走神經切除的大鼠ghre?lin的攝食促進效應消失,表明ghrelin可以通過作用于迷走神經傳入神經纖維發揮作用。DVC是腹腔胃腸道機械和化學信息的傳入中樞的第一個換元站,迷走?迷走反射在此整合。下丘腦弓狀核AgRP神經元和室旁核有雙向聯系,而DVC的上行纖維經臂旁核終止于室旁核。DVC包括孤束核、迷走神經運動背核和最后區。孤束核和最后區不但接受腹部迷走神經的傳入,而且最后區屬位于第四腦室底部的室周器官,其毛細血管有很多窗孔,血?腦脊液屏障不完整,和弓狀核一樣是感受循環血液中ghrelin的理想部位。有充分理由認為,DVC是ghrelin誘發多食反應的作用靶點。
           
          本實驗結果顯示,在SD大鼠DVC區微量注射20 pmol ghrelin后1、2、3 h,下丘腦NPY mRNA、AgRP mRNA的表達均明顯增加,表明DVC區與下丘腦NPY/AgRP神經元通路是密切相關的。此外,本實驗結果還顯示,DVC區注射ghrelin后1 h發揮作用,在2 h左右達到最高峰,此后其作用漸漸消退。表明ghrelin誘發多食反應可能有兩條途徑:第一條是目前比較公認的“前腦機制”, 即ghrelin作用于下丘腦弓狀核NPY/AgRP 神經元的 GHS?R; 第二條是ghrelin作用于腦干DVC的GHS?R,然后通過上行纖維引起下丘腦NPY mRNA 及AgRP mRNA的表達增加,且兩條途徑可以協同作用引起多食反應。
        【參考文獻】
           [1]CHEN H Y, TRUMBAUER M E, CHEN A S, et al. Orexigenic action of peripheral ghrelin is mediated by neuropeptide Y and agouti?related protein[J]. Endocrinology, 2004,145:2607?2612.

          [2]KIMBERLY P, KINZIG K A, SCOTT J H, et al. Lateral ventricular ghrelin and fourth ventricular ghrelin induce similar increases in food intake and patterns of hypothalamic gene expression[J]. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol, 2006,290:R1565?R1569.

          [3]ZIGMAN J M, JONES J E, LEE C E, et al. Expression of ghrelin receptor mRNA in the rat and the mouse brain[J]. J Comp Neurol, 2006,494:528?548.

          [4]FAULCONBRIDGE L F, CUMMINGS D E, KAPLAN J M, et al. Hyperphagic effects of brainstem ghrelin administration[J]. Diabetes, 2003,52:2260?2265.

          [5]GEORGE P, CHARLES W. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates[M]. 5th ed.San Diego:Elsevier Academic Press, 2004:98?116.

          [6]薛雁,陳蕾. 黑質網狀帶GABAB受體對大鼠運動行為的影響[J]. 青島大學醫學院學報, 2007,43(4):286?288.

          [7]周曉彬,紀新強,徐莉. 醫用統計學軟件PPMS 1.5的組成和應用特點[J]. 齊魯醫學雜志, 2009,24(1):29?32.

          [8]KOJIMA M, HOSODA H, DATE Y, et al. Ghrelin is a growth?hormone releasing acylated peptide from stomach[J]. Nature, 1999,402: 656?660.

          [9]NAKAZATO M, MURAKAMI N, DATE Y, et al. A role for ghrelin in the central regulation of feeding[J]. Nature, 2001,409:194?198.

          [10]TSCHOP M, SMILEY D L, HEIMAN M L. Ghrelin induces adiposity in rodents[J]. Nature, 2000,407:908?913.

          [11]WILLESEN M G, KRISTENSEN P, ROMER J. Co?localization of growth hormone secretagogure receptor and NPYmRNA in the rat arcuate nucleus of the rat[J]. Neuroendocrino?logy, 1999,70:306?316.

        【大鼠腦干DVC區注射ghrelin對弓狀核NPY mRNA及AgRP m】相關文章:

        小兒頭皮針的注射技巧11-30

        醫用注射器在化學實驗中的應用05-26

        絕對期青光眼球后注射氯丙嗪的止痛效果08-21

        “M”金字招牌下的社會化解讀08-12

        談補陽還五湯對腦缺血大鼠神經功能及細胞形態的影響論文04-30

        住區綠地環境促進人群健康05-15

        關于民族聚居區高校的科研角色08-08

        片區土地開發的排水問題研究論文04-26

        淺論幼兒園美術區角環境創設08-25

        多彩的區角活動讓幼兒健康快樂地發展06-02

        国产高潮无套免费视频_久久九九兔免费精品6_99精品热6080YY久久_国产91久久久久久无码

        1. <tt id="5hhch"><source id="5hhch"></source></tt>
          1. <xmp id="5hhch"></xmp>

        2. <xmp id="5hhch"><rt id="5hhch"></rt></xmp>

          <rp id="5hhch"></rp>
              <dfn id="5hhch"></dfn>