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研究梔子苷的鎮痛和抗炎作用
摘要:目的研究梔子苷的鎮痛和抗炎作用。方法小鼠熱板實驗,醋酸誘發小鼠扭體反應實驗,梔子苷對二甲苯致小鼠耳腫脹實驗,梔子苷對醋酸誘發小鼠毛細血管通透性實驗,梔子苷對角叉菜膠致小鼠足腫脹實驗等。結果梔子苷25 mg/kg劑量(P<0.05)能延長熱刺激所致小鼠痛覺反應時間,梔子苷50 mg/kg劑量組和12.5 mg/kg劑量組對醋酸誘發小鼠扭體反應有明顯的抑制作用(P<0.05),最大扭體次數減少百分率可達55%,具有一定的鎮痛作用;梔子苷12.5 mg/kg劑量組(P<0.05)和25 mg/kg劑量組(P<0.01)對二甲苯致小鼠耳腫脹均有明顯的抑制作用,梔子苷大劑量(50 mg/溶液kg)組能導致腹腔毛細血管滲透液的吸光值顯著降低(P<0.01),即對急性炎癥滲出有較明顯的抑制作用;梔子苷對角叉菜膠致小鼠足腫脹沒有明顯抗炎作用,炎癥滲出液中PGE2的含量與對照組比較無明顯差異,其抗炎作用可能與PGE2釋放沒有關系。結論 梔子苷有一定的鎮痛和抗炎作用。
關鍵詞:梔子苷 鎮痛作用 抗炎作用
梔子是藥食兩用傳統中藥,藥用梔子是茜草科植物梔子Gardenia jasminoides Ellis的干燥成熟果實,性寒味苦 ,歸心、肺、三焦經 ,具有瀉火除煩 、清熱利尿 、涼血解毒之功效。用于熱病心煩 ,黃疸尿赤 ,血淋澀痛 ,血熱吐衄 ,目赤腫痛 ,火毒瘡瘍等證,外治扭挫傷痛。梔子果中含有含環烯醚萜苷類成分,其中梔子苷(geniposide)含量最高(含量可達6%),在梔子的藥用效果中起重要作用[1]。本實驗利用梔子黃色素生產過程中的廢液提取和精制梔子苷[2],主要對精制的梔子苷進行了鎮痛和抗炎作用研究[1,2]。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 藥品與試劑杜冷ding,宜昌人福藥業有限公司產品;梔子苷,本實驗室提取純化[2];氫化可的松注射液,天津藥業集團新鄭股份有限公司產品;伊文思藍,上;瘜W試劑采購供應站分裝廠產品;角叉菜膠, Sigma公司。
1.1.2 動物昆明種小鼠,18~22 g,湖北省動物防疫中心提供。
1.2 方法[3,4]
1.2.1 梔子苷對小鼠鎮痛作用的實驗研究昆明種雌性小鼠40只,隨機分為 5 組:生理鹽水陰性對照組、梔子苷大劑量組(50 mg/kg)、梔子苷中劑量組(25 mg/kg)、梔子苷小劑量組(12.5 mg/kg)、杜冷ding陽性對照組。分組前進行篩選,調節小鼠熱板測痛儀,使溫度保持在(55.0±0.2)℃,每次取1只小鼠,放入測痛儀內,記錄自放入到出現舔后足所需的時間(s)作為該鼠的痛閾值。凡小于5 s或大于30 s出現舔后足者,以及喜跳躍者,一律棄去不用。取合格者進行分組,標記,重新測量兩次,取平均值作為該鼠給藥前的基礎痛閾值。
梔子苷大、中、小劑量組連續3d 按時按量皮下注射給藥,給藥1次/d,給藥時間間隔24h/次。每天給藥前,先稱小鼠體重,按小鼠的體重計算給藥量后再給藥,陰性對照組給予等量體積的生理鹽水。第4天時,給藥組稱重后按小鼠體重皮下注射給藥,5組按順序給藥。每組給藥后30,60,90,120 min分別測定小鼠痛閾值。若小鼠在熱板上停留60 s后仍無痛反應,則取出,按60s計算。比較給藥組和對照組的差異情況,作組間t檢驗。
1.2.2 梔子苷對醋酸誘發小鼠扭體反應的影響
取昆明種小鼠 40 只,雌雄各半,按性別體重隨機分為 5 組,每組 8 只,打點標記后送入動物房飼養。5 組對應的分別是:生理鹽水陰性對照組、梔子苷大劑量組(50 mg/kg)、梔子苷中劑量組(25 mg/kg)、梔子苷小劑量組(12.5 mg/kg)、杜冷ding陽性對照組。前3 d給藥同“1.2.1”項。第4天時,稱完小鼠體重后,空白對照組和給藥組仍然按時按量皮下注射給藥,并且與前次給藥時間間隔24 h,杜冷ding陽性對照組最后給藥。依每只小鼠給藥時間為準,杜冷ding陽性組小鼠給藥 300 min 后即陰性組及給藥組給藥1h后,腹腔注射0.6%的醋酸溶液0.1 ml/10 g。觀察扭體反應并計算20 min內小鼠扭體數。比較給藥組和對照組的差異情況,作t檢驗。
1.2.3 梔子苷對二甲苯致小鼠耳廓腫脹的影響
取昆明種小鼠 40 只,雄性,體重 18~22g,按體重隨機分為 5 組:生理鹽水陰性對照組、梔子苷大劑量組(50 mg/kg)、梔子苷中劑量組(25 mg/kg)、梔子苷小劑量組(12.5 mg/kg)、氫化可的松陽性對照組。每組 8 只,打點標記后送入動物房飼養。前3 d給藥同“1.2.1”項。第 4 天時,稱完小鼠體重后,前4組仍然按時按量皮下注射給藥,并且與前次給藥時間間隔24 h,氫化可的松陽性對照組最后給藥。以每只小鼠給完藥的時間為基準,氫化可的松陽性對照組給藥30 min 后,給藥組給藥1 h后,各組小鼠右耳前后兩面涂抹二甲苯(0.02 ml/只);以每只小鼠致炎時間為準,15 min 后將小鼠脫頸椎處死,沿耳廓基線剪下兩耳,用8 mm直徑打孔器于左右耳廓相應部位各打一耳片,電子天平稱重。以左右耳片的重量之差作為腫脹度。算出腫脹度和腫脹抑制率(%),并與對照組比較(t檢驗)。
1.2.4 梔子苷對醋酸誘發小鼠毛細血管通透性的影響
小鼠分組同“1.2.3”項。前 3 d給藥同“1.2.1”項。第4天時,稱完小鼠體重后,3 個給藥組及陰性對照組仍然按時按量皮下注射給藥,并且與前次給藥時間間隔 24 h 。氫化可的松陽性對照組最后給藥,皮下注射氫化可的松。以每只小鼠給完藥的時間為基準,氫化可的松陽性對照組給藥 30 min 后,空白及給藥組給藥 1 h 后,尾靜脈注射 0.5%的伊文思藍溶液 0.1 ml/10 g 體重,后立即腹腔注射 0.6% 醋酸溶液 0.1 ml/10 g 體重,以注射完醋酸溶液的時間為基準,20 min后脫頸椎處死小鼠,剪開腹腔,用8 ml生理鹽水分 4 次清洗腹腔,合并洗滌液,3 000 r/min 離心15 min,取上清液,于 590 nm 處測定其吸光值。
1.2.5 梔子苷對角叉菜膠致小鼠足腫脹的影響
小鼠分組同“1.2.3”項。前3 d給藥同“1.2.1”項。第4天時,稱完小鼠體重后,空白對照組和3個給藥組仍然按時按量皮下注射給藥,并且與前次給藥時間間隔24 h,氫化可的松陽性對照組最后給藥。依每只小鼠給藥時間為準,氫化可的松陽性組小鼠給藥 30 min 后,陰性及給藥組給藥 1 h后致炎,即在每只動物右后足注射 1% 角叉菜膠 50 μl 致炎;以每組小鼠致炎時間為準,致炎后3 h處死小鼠,稱左、右后足重量,以左、右后足重量的差值作為腫脹厚度。比較給藥組和對照組的差異情況,作t檢驗。
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